GB/T 5009.218-2008 水果和蔬菜中多种农药残留量的测定

　　ICS 67 . 040 C 53

　　中 华 人 民 共 和 国 国 家 标 准

　　GB/T 5009 . 218—2008

　　水果和蔬菜中多种农药残留量的测定

　　Determination ofmultipesticideresiduesin fruitsand vegetables

　　2008-12-03 发布 2009-03-01 实施

　　中华人民共和国卫生部中国国家标准化管理委员会

　　

　　发

　　

　　布

　　GB/T 5009 . 218—2008

　　目 次

　　前言 Ⅲ

　　1 范围 1

　　2 水果和蔬菜中 211 种农药残留量的测定 1

　　2 . 1 原理 1

　　2 . 2 试剂和材料 1

　　2 . 3 仪器和设备 1

　　2 . 4 试样制备与保存 2

　　2 . 5 测定步骤 2

　　2 . 6 结果计算 3

　　2 . 7 精密度 3

　　3 水果和蔬菜中 107 种农药残留量的测定 4

　　3 . 1 原理 4

　　3 . 2 试剂和材料 4

　　3 . 3 仪器和设备 4

　　3 . 4 测定步骤 4

　　3 . 5 结果计算 5

　　3 . 6 回收率和精密度 6

　　附录 A(规范性附录) 水果和蔬菜中 211 种农药种类和分组及配制溶剂表 7

　　附录 B(规范性附录) 水果和蔬菜中 107 种农药种类及配制溶剂 14

　　附录 C(资料性附录) 水果和蔬菜中 211 种农药的保留时间 、定量和定性选择离子 、线性范围 、

　　回收率范围 、精密度范围及定量限 16

　　附录 D(资料性附录) EI选择离子方式初筛 、鉴定水果和蔬菜中 107 种被测农药的鉴别离子及

　　定量限 27

　　附录 E(资料性附录) 水果和蔬菜中 211 种农药的选择监测离子时间设定参数表 31

　　附录 F(资料性附录) 水果和蔬菜中 211 种农药标准物气相色谱-质谱选择离子色谱图 34

　　附录 G(资料性附录) 水果和蔬菜中 107 种农药在色谱柱上的保留时间和比保留值 36

　　附录 H(资料性附录) 水果和蔬菜中 107 种农药在不同极性色谱柱上的总离子流图 40

　　附录 I(资料性附录) 水果和蔬菜中 107 种农药的 3 个浓度水平测得的回收率和精密度 41

　　Ⅰ

　　GB/T 5009 . 218—2008

　　前 言

　　本标准的附录 A 、附录 B 为规范性附录，附录 C、附录 D、附录 E 、附录 F、附录 G 、附录 H 、附录 I 为资料性附录 。

　　本标准由中华人民共和国卫生部提出并归 口 。

　　本标准由中华人民共和国卫生部负责解释 。

　　本标准水果和蔬菜中 211 种农药残留量的测定由中华人民共和国吉林出入境检验检疫局 、中华人民共和国天津出入境检验检疫局 、中华人民共和国辽宁出入境检验检疫局 、中华人民共和国山西出入境检验检疫局负责起草;水果和蔬菜中 107 种农药残留量的测定由中华人民共和国天津出入境检验检疫局 、中华人民共和国吉林出入境检验检疫局 、中华人民共和国辽宁出入境检验检疫局负责起草 。

　　本标准水 果 和 蔬 菜 中 211 种 农 药 残 留 量 的 测 定 主 要 起 草 人：牟 峻 、王 明 泰 、邹 明 强 、许 泓 、吴 剑 、赵庆松 、卫锋 、傅英文 、韩 大 川;水 果 和 蔬 菜 中 107 种 农 药 残 留 量 的 测 定 主 要 起 草 人：许 泓 、林 安 清 、唐丹舟 、牟峻 、古珑 、卫锋 、邹明强 、穆乃强 。

　　Ⅲ

　　GB/T 5009 . 218—2008

　　水果和蔬菜中多种农药残留量的测定

　　1 范围

　　本标准规定了水果和蔬菜中 211 种农药残留量的测定方法(见表 A. 1 和表 A. 2) ,以及水果和蔬菜中 107 种农药残留量的测定方法(见表 B. 1) 。

　　本标准适用于菠菜 、大葱 、番茄 、柑橘 、苹果中 211 种农药残留量的测定和苹果 、梨 、白菜 、萝 卜 、藕 、大葱 、菠菜 、洋葱中 107 种农药残留量的测定 。

　　水果和蔬菜中 211 种农药残留量 测 定 方 法 的 定 量 限(LOQ) 参 见 表 C. 1 和 表 C. 2 ,水 果 和 蔬 菜 中107 种农药残留量测定方法的定量限(LOQ)参见表 D. 1 。

　　2 水果和蔬菜中 2 1 1 种农药残留量的测定

　　2 . 1 原理

　　试样中用水-丙酮均质提取，经二氯甲烷液-液分配，以凝胶色谱柱净化，再经活性炭固相柱净化，洗脱液浓缩并溶解定容后，供气相色谱-质谱(GC-MS)测定和确证，外标法定量 。

　　2 . 2 试剂和材料

　　除另有规定外，所用试剂均为分析纯，水为二级水，电导率25 ℃ ≤0 . 10 mS/m 。

　　2 . 2 . 1 丙酮(C3 H 6 O) ：残留级 。

　　2 . 2 . 2 二氯甲烷(CH2 Cl2 ) ：残留级 。

　　2 . 2 . 3 乙酸乙酯(C4 H8 O2 ) ：残留级 。

　　2 . 2 . 4 环己烷(cyclo-C6 H 14 ) ：残留级 。

　　2 . 2 . 5 正己烷(n-C6 H 14 ) ：残留级 。

　　2 . 2 . 6 甲醇(CH4 O) ：残留级 。

　　2 . 2 . 7 苯(C6 H 6 ) ：残留级 。

　　2 . 2 . 8 氯化钠(NaCl) ：优级纯 。

　　2 . 2 . 9 无水硫酸钠(Na2 SO4 ) : 650 ℃灼烧 4 h ,贮于密封容器中备用 。

　　2 . 2 . 10 氯化钠水溶液：20 g/L 。

　　2 . 2 . 1 1 活性炭固相萃取柱(pesticarb) : 0 . 5 g, 或相当者，使用前用 5 mL正己烷预淋洗 。

　　2 . 2 . 12 211 种农药标准品：纯度均 ≥93 . 5%,见表 A. 1 和表 A. 2 。

　　2 . 2 . 13 标准溶液

　　2 . 2 . 13 . 1 标准 储 备 液：分 别 准 确 称 取 适 量 的 每 种 农 药 标 准 品，用 丙 酮 或 相 应 溶 剂(见 表 A. 1 和表 A. 2)配制成浓度为 500 μg/mL ~ 1 000 μg/mL 的标准储备液 。该溶液可在 0 ℃ ~ 4 ℃冰箱中保存12 个月 。

　　2 . 2 . 13 . 2 标准中间工作液：根据农药的性质及其在色谱保留时间的不同，将 211 种农药分成 A 、B 两组，分别准确移取一定体积的各农药标准储备液，可根据需要用丙酮稀释成适用浓度的 A 组混合标准中间工作液和 B组混合标准中间工作液 。该溶液可在 0 ℃ ~ 4 ℃冰箱中保存 6 个月 。

　　2 . 2 . 13 . 3 混合标准工作液：准确移取一定体积的 A组混合标准中间工作液和 B组混合标准中间工作液，可根据需要用正己烷稀释成适用浓度的 A组混合标准工作液和 B组混合标准工作液 。该溶液可在0 ℃ ~ 4 ℃冰箱中保存 1 个月 。

　　2 . 3 仪器和设备

　　2 . 3 . 1 气相色谱-质谱仪：配有电子轰击源(EI) 。

　　1

　　GB/T 5009 . 218—2008

　　2 . 3 . 2 凝胶色谱仪：配有馏分收集器 。

　　2 . 3 . 3 食品捣碎机 。

　　2 . 3 . 4 均质器 。

　　2 . 3 . 5 旋转蒸发器 。

　　2 . 3 . 6 氮吹仪 。

　　2 . 3 . 7 漩涡混合器 。

　　2 . 3 . 8 无水硫酸钠柱：7 . 5 cm×1 . 5 cm(内径)，内装 5 cm 高无水硫酸钠 。

　　2 . 3 . 9 具塞锥形瓶：250 mL 。

　　2 . 3 . 10 分液漏斗：250 mL 。

　　2 . 3 . 1 1 浓缩瓶：50 mL、250 mL 。

　　2 . 3 . 12 移液器：1 000 μL、100 μL、10 μL 。

　　2 . 4 试样制备与保存

　　2 . 4 . 1 试样制备

　　取水果或蔬菜样品 500 g,或去壳 、去籽 、去皮 、去茎 、去根 、去冠(不可用水洗涤)，将其可食用部分切碎后，依次用食品捣碎机将样品加工成浆状 。 混匀，均分成两份作为试样，分装入洁净的盛样袋内，密闭，标明标记 。

　　2 . 4 . 2 试样保存

　　将试样于 0 ℃ ~ 4 ℃保存 。

　　注：在抽样及制样的操作过程中，应防止样品受到污染或发生残留物含量的变化 。

　　2 . 5 测定步骤

　　2 . 5 . 1 提取

　　称取约 25 g(精确至 0 . 1 g)试样于 250 mL具塞锥形瓶中，加入 20 mL水，混摇后放置 1 h 。然后加入 100 mL丙酮，高速均质提取 3 min 。将提取液抽滤于 250 mL浓缩瓶中 。残渣再用 50 mL丙酮重复提取一次，合并滤液，于 40 ℃水浴中旋转浓缩至约 20 mL 。将浓缩提取液转移至 250 mL分液漏斗中 。

　　在上述分液漏斗中，加入 100 mL氯化钠水溶液和 100 mL二氯甲烷，振摇 3 min,静置分层，收集二氯甲烷相 。水相再用 2 × 50 mL二氯甲烷重复提取两次，合并二氯甲烷相 。经无水硫酸钠柱(2 . 3 . 8) 脱水，收集于 250 mL浓缩瓶中，于 40 ℃水浴中旋转浓缩至近干，加入 5 mL 乙酸乙酯-环己烷(1+1) 以溶解残渣，并用 0 . 45 μm 滤膜过滤，待净化 。

　　2 . 5 . 2 净化

　　2 . 5 . 2 . 1 凝胶色谱净化(GPC)

　　2 . 5 . 2 . 1 . 1 凝胶色谱条件

　　a) 净化柱：700 mm×25 mm, Bio Beads S-X31) , 或相当者 。

　　b) 流动相：乙酸乙酯-环己烷(1+1) 。

　　c) 流速：5 . 0 mL/min 。

　　d) 样品定量环：5 . 0 mL 。

　　e) 预淋洗体积：50 mL 。

　　f) 洗脱体积：210 mL 。

　　g) 收集体积：105 mL ~ 185 mL 。

　　2 . 5 . 2 . 1 . 2 凝胶色谱净化步骤

　　将 5 mL待净化液按 2 . 5 . 2 . 1 . 1 规定的条件进行净化，合并馏分收集器中的收集液于 250 mL浓缩

　　1) 给出这一信息是为了方便本标准的使用者，并不表示对该产品的认可 。如果其他等效产品具有相同的效果，则可使用这些等效的产品 。

　　2

　　GB/T 5009 . 218—2008

　　瓶中，于 40 ℃水浴中旋转浓缩至近干，加入 2 mL正己烷以溶解残渣，待净化 。

　　2 . 5 . 2 . 2 固相萃取净化(SPE)

　　将 2 mL溶解液倾入已预淋洗后的活性炭固相萃取柱中，用 30 mL 乙酸乙酯-正己烷(2+3) 进行洗脱 。 收集全部洗脱液于 50 mL 浓 缩 瓶 中，于 40 ℃水 浴 中 旋 转 浓 缩 至 干 。 用 乙 酸 乙 酯 溶 解 并 定 容 至2 . 0 mL , 供气相色谱-质谱测定 。

　　2 . 5 . 3 气相色谱-质谱测定

　　2 . 5 . 3 . 1 气相色谱-质谱条件

　　a) 色谱柱：30 m×0 . 25 mm(内径)，膜厚 0 . 25 μm, DB-5 MS石英毛细管柱，或相当者 。

　　10 ℃/min 3 ℃/min

　　b) 色谱柱温度：50 ℃(2 min) —→ 180 ℃(1 min) —→ 270 ℃(14 min) 。

　　c) 进样口温度：280 ℃ 。

　　d) 色谱-质谱接口温度：280 ℃ 。

　　e) 载气：氦气，纯度 ≥99 . 999% , 1 . 2 mL/min 。

　　f) 进样量：1 μL 。

　　g) 进样方式：无分流进样，1 . 5 min后开阀 。

　　h) 电离方式：EI 。

　　i) 电离能量：70 eV 。

　　j) 测定方式：选择离子监测方式 。

　　k) 溶剂延迟：5 min 。

　　l) 选择监测离子(m/z) ：将 211 种农药分成 A 、B 两组，每种农药分别选择 1 个定量离子，2 个 ~ 3 个定性(阳性确证)离子 。两组选择监测离子时间设定参数参见表 E. 1 和表 E. 2 ,每种农药的定量离子和定性离子参见表 C. 1 和表 C. 2 。

　　2 . 5 . 3 . 2 定量测定

　　根据样液中被测农药含量，选定浓度相近的标准工作溶液 。标准工作溶液和待测样液中农药的响应值均应在仪器检测的线性范围内 。对混合标准溶液与样液等体积分组分时段参插进样测定 。外标法定量 。在上述气相色谱-质谱条件下，各标准物质的保留时间参见表 C. 1 和表 C. 2 , 气相色谱-质谱选择离子色谱图参见图 F. 1 和图 F. 2 。

　　2 . 5 . 3 . 3 定性测定

　　对混合标准溶液及样液按上述规定的条件进行测定时，如果样液与混合标准溶液的选择离子图中，在相同保留时间有峰出现，则根据定性选择离子的种类及其丰度比对其进行阳性确证 。各种农药的选择离子的种类及其丰度比参见表 C. 1 和表 C. 2 。

　　2 . 6 结果计算

　　按式(1)计算试样中每种农药残留含量：

　　xi ……………………………( 1 )

　　式中：

　　xi— 试样中农药i残留量，单位为微克每克(μg/g) ;

　　Ai— 样液中农药 i的峰面积(或峰高);

　　ci— 标准工作液中农药 i的浓度，单位为微克每毫升(μg/mL) ;

　　V— 样液最终定容体积，单位为毫升(mL) ;

　　Ais — 标准工作液中农药 i的峰面积(或峰高);

　　m— 最终样液代表的试样质量，单位为克(g) 。

　　2 . 7 精密度

　　本方法对 211 种农药在 0. 1 mg/kg~ 5. 0 mg/kg浓度水平，添加回收率和精密度参见表 C. 1 和表 C. 2 。

　　3

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　　3 水果和蔬菜中 107 种农药残留量的测定

　　3 . 1 原理

　　试样中农药用有机溶剂提取，再经液液分配除去干扰物质，用气相色谱-质谱仪测定，当被测组分不能满足分离条件时，更换不同极性色谱柱加以分离，内标法定量 。

　　3 . 2 试剂和材料

　　除另有规定外，所用试剂均为分析纯，水为二级水，电导率25 ℃ ≤0 . 10 mS/m 。

　　3 . 2 . 1 丙酮(C3 H 6 O) ：重蒸馏 。

　　3 . 2 . 2 石油醚：30 ℃ ~ 60 ℃ ,重蒸馏 。

　　3 . 2 . 3 正己烷(n-C6 H 14 ) ：重蒸馏 。

　　3 . 2 . 4 苯(C6 H 6 ) 。

　　3 . 2 . 5 二氯甲烷(CH2 Cl2 ) ：重蒸馏 。

　　3 . 2 . 6 甲醇(CH4 O) 。

　　3 . 2 . 7 氯化钠(NaCl) 。

　　3 . 2 . 8 无水硫酸钠(Na2 SO4 ) ：在 550 ℃灼烧 4 h ,置入干燥器中冷却，备用 。

　　3 . 2 . 9 农药标准品：107 农药标准品纯度均 ≥91%,见表 B. 1 。

　　3 . 2 . 10 内标标准物质：内吸磷，纯度 ≥98%;乙基谷硫磷，纯度 ≥98% 。

　　3 . 2 . 1 1 农药标准溶液：分别准确称取附录 B 中每种农药的标准品，见表 B. 1 的溶剂选择，用丙酮 、苯 、二氯甲烷 、甲醇或正己烷分别配制成浓度为 1 mg/mL 的标准储备液 。再根据需要用丙酮配制成不同浓度的混合标准工作溶液 。标准储备液保存于 4 ℃冰箱中，可使用一年;混合标准工作溶液保存于 4 ℃冰箱中，可使用一个月 。

　　3 . 2 . 12 内标标准溶液：分别准确称取内吸磷和乙基谷硫磷标准品，用丙酮配制成 1 mg/mL 的混合内标储备液，根据需要再稀释成合适浓度的内标工作液 。

　　3 . 3 仪器和设备

　　3 . 3 . 1 气相色谱-质谱联用仪：带有电子轰击离子源(EI) 。

　　3 . 3 . 2 快速漩流浓缩仪：配有冷却循环水机 。

　　3 . 3 . 3 组织捣碎机 。

　　3 . 3 . 4 高速均质器：8 000 r/min ~ 24 000 r/min 。

　　3 . 3 . 5 离心机：3 000 r/min 。

　　3 . 4 测定步骤

　　3 . 4 . 1 制样

　　取约 200 g蔬菜 、水果试样，经组织捣碎机破碎成浆状 。

　　3 . 4 . 2 提取

　　称取 10 . 0 g 混匀的试样，于 100 mL离心管中，加入 25 mL 丙酮，定量加入内标工作溶液，高速均质 2 min,于 3 000 r/min下离心 5 min,将上清液经垫有滤纸的漏斗移至 250 mL 分液漏斗中 。 于离心管中再加入 25 mL丙酮，高速均质 2 min,在 3 000 r/min 下 离 心 5 min,上 清 液 经 过 滤 合 并 至 分 液 漏斗中 。

　　3 . 4 . 3 净化

　　上述分液漏斗中加入 20 mL 石油醚 、20 mL二氯甲烷，用力振摇 1 min,将下层水相转移至另一只分液漏斗中，上层有机相移至具塞三角瓶中 。 向装有水相的分液漏斗中加入 2 g 氯化钠，用力振摇至氯化钠基本溶解，加入 2 × 20 mL二氯甲烷，用力振摇 1 min,将下层有机相合并于三角瓶中 。 向三角瓶中加入约 15 g无水硫酸钠，静置约 30 min 。

　　将脱水后提取液经垫有滤纸的漏斗转移至快速漩流浓缩仪的浓缩瓶中，用 2 × 20 mL二氯甲烷洗涤硫

　　4

　　GB/T 5009 . 218—2008

　　酸钠，一并转移至浓缩瓶中 。设定快速漩流浓缩仪水浴温度为 30 ℃ 、扇叶旋转速度为 4 000 r/min,冷凝套内循环水温度控制在 5 ℃ ~ 10 ℃之间，在此条件下浓缩至 1 mL , 供气相色谱-质谱分析 。

　　3 . 4 . 4 气相色谱-质谱测定

　　3 . 4 . 4 . 1 气相色谱测定条件

　　a) 色谱柱：石英毛细管柱 DB-5MS,柱长 25 m,内径 0 . 25 mm,涂膜厚度 0 . 25 μm 。

　　石英毛细管柱 DB-35MS,柱长 25 m,内径 0 . 25 mm,涂膜厚度 0 . 25 μm 。

　　石英毛细管柱 DB-1701 ,柱长 25 m,内径 0 . 25 mm,涂膜厚度 0 . 25 μm 。

　　柱与进样口汽化室之间接 1 m 长的预柱 。

　　b) 载气：氦气，纯度 ≥99 . 999% 。

　　c) 载气流速：1 mL/min 。

　　d) 柱温：初始温度为 50 ℃ ,以 20 ℃/min程序升温至 120 ℃ ,再以 3 ℃/min程序升温至 280 ℃ ,保持 15 min 。

　　e) 进样量：2 μL 。

　　f) 进样方式：不分流进样，1 min后打开分流阀 。

　　g) 进样口温度：260 ℃ 。

　　3 . 4 . 4 . 2 质谱测定条件

　　a) 接口温度：250 ℃ 。

　　b) 电离方式：EI 。

　　c) 电子能量：70 eV 。

　　d) 离子源温度：200 ℃ 。

　　e) 检测电压(光电倍增器)：350 V(检测时可根据灵敏度作调整)。

　　f) 扫描范围：全扫描检测质量范围为 50 u ~ 550 u,扫描速度 0 . 45 s 。

　　g) 选择离子检测：根据被测物的保留时间，在对应的时间窗内设定特征离子，107 种农药所选择的筛选和定性离子参见表 D. 1 。

　　h) 扫描速度：0 . 1 s 。

　　i) 溶剂延时：5 min 。

　　3 . 4 . 4 . 3 气相色谱-质谱测定

　　根据上述测定条件，首先注入含内标的被测农药混合标准品溶液，其浓度约为 2 μg/mL,确定内标和被测农药的保留时间(RT值)，并设置或校准被测农药检测离子的时间窗 。 为保证有足够的检测灵敏度，改善在一次分析时对不能较好分离物质的检测，设定两个保留时间窗扫描程序，在每一个时间窗内少放几个选择离子，将在色谱柱上不能分离的被测物分别编入两个不同的扫描程序内，每个样品进两次，进行两次分析 。 当被测组分不能满足分离条件时，更换不同极性色谱柱加以分离 。 107 种农药在三种不同色谱柱上的保留时间和比保留时间参见表 G. 1 ,总离子流图参见图 H . 1 ~ 图 H . 3 。

　　3 . 4 . 5 空白试验

　　除添加试样外，均按上述步骤进行 。

　　3 . 5 结果计算

　　每一种农药残留量选择其 基 峰 离 子 的 质 量 色 谱 图，6 min ~ 34 min 内 被 测 农 药 以 内 吸 磷 为 内 标， 34 min ~ 64 min 内被测农药以乙基谷硫磷为内标，按式(2)分别计算：

　　= Hi × H,× ci, × m

　　X H × Hi, × c,× mi ……………………………( 2 )

　　式中：

　　X— 样品中每一种被测农药残留量，单位为毫克每千克(mg/kg) ;

　　H— 样品中被测农药选择离子的峰高或峰面积;

　　5

　　GB/T 5009 . 218—2008

　　Hi’— 标准溶液中内标物选择离子的峰高或峰面积;

　　c′— 标准溶液中农药的浓度，单位为微克每毫升(μg/mL) ; mi— 样品中添加内标物的质量，单位为微克(μg) ;

　　Hi— 标准溶液中农药选择离子的峰高或峰面积;

　　H′— 样品中内标物选择离子的峰高或峰面积;

　　c′i— 标准溶液中内标物质的浓度，单位为微克每毫升(μg/mL) ;

　　m— 样品的质量，单位为克(g) 。

　　3 . 6 回收率和精密度

　　本方法回收率和精密度参见附录 I 。

　　6

　　GB/T 5009 . 218—2008

　　附 录 A

　　(规范性附录)

　　水果和蔬菜中 2 1 1 种农药种类和分组及配制溶剂表

　　A.1 A 组 水果和蔬菜中 118 种农药种类及配制溶剂见表 A. 1 。

　　表 A.1 A 组 水果和蔬菜中 1 18 种农药种类及配制溶剂表

　　序号

　　农药名称

　　英文名称

　　CAS号

　　化学分子式

　　溶剂

　　1

　　敌敌畏

　　Dichlorvos

　　000062-73-7

　　C4 H7 Cl2 O4 P

　　丙酮

　　2

　　克百威

　　Carbofuran

　　001563-66-2

　　C12 H 15 NO3

　　甲醇

　　3

　　丙草丹

　　EPTC

　　000759-94-4

　　C9 H 19 NOS

　　丙酮

　　4

　　速灭磷

　　Mevinphos

　　007786-34-7

　　C7 H 13 O6 P

　　丙酮

　　5

　　灭草敌

　　Vernolate

　　001929-77-7

　　C10 H21 NOS

　　甲醇

　　6

　　克草敌

　　Pebulate

　　001114-71-2

　　C10 H21 NOS

　　甲醇

　　7

　　甲荼威

　　Carbaryl

　　000063-25-2

　　C12 H 11 NO2

　　丙酮

　　8

　　禾草特

　　Molinate

　　002212-67-1

　　C9 H 17 NOS

　　丙酮

　　9

　　异丙威

　　Isoprocarb

　　002631-40-5

　　C11 H 15 NO2

　　甲醇

　　10

　　仲丁威

　　Fenobucarb

　　003766-81-2

　　C12 H 17 NO2

　　甲醇

　　11

　　残杀威

　　Propoxur

　　000114-26-1

　　C11 H 15 NO3

　　甲醇

　　12

　　甲基内吸磷

　　Demeton methyl

　　000919-86-8

　　C6 H 15 O3 PS2

　　丙酮

　　13

　　苯敌草

　　Phenmedipham

　　013684-56-5

　　C16 H 16 N2 O4

　　丙酮

　　14

　　氯苯胺灵

　　Chlorpropham

　　000101-21-3

　　C10 H 12 ClNO2

　　苯

　　15

　　百治磷

　　Dicrotophos

　　000141-66-2

　　C8 H 16 NO5 P

　　苯

　　16

　　戊菌隆

　　Pencycuron

　　066063-05-6

　　C19 H21 ClN2 O

　　丙酮

　　17

　　甲拌磷

　　Phorate

　　000298-02-2

　　C7 H 17 O2 PS3

　　丙酮

　　18

　　甲基乙拌磷

　　Thiometon

　　000640-15-3

　　C6 H 15 O2 PS3

　　丙酮

　　19

　　氯硝胺

　　Dicloran

　　000099-30-9

　　C6 H4 Cl2 N2 O2

　　丙酮

　　20

　　西玛津

　　Simazine

　　000122-34-9

　　C7 H 12 ClN5

　　二氯甲烷

　　21

　　丙硫克百威

　　Benfuracarb

　　082560-54-1

　　C20 H30 N2 O5 S

　　甲醇

　　22

　　噻节因

　　Dimethipin

　　055290-64-7

　　C6 H 10 O4 S2

　　丙酮

　　23

　　异恶草酮

　　Clomazone

　　081777-89-1

　　C12 H 14 ClNO2

　　丙酮

　　24

　　林丹

　　Lindane

　　000058-89-9

　　C6 H 6 Cl6

　　丙酮

　　25

　　五氯硝基苯

　　Pentachloronitrobenzene

　　000082-68-8

　　C6 Cl5 NO2

　　丙酮

　　26

　　胺丙畏

　　Propetamphos

　　031218-83-4

　　C10 H20 NO4 PS

　　丙酮

　　27

　　拿草特

　　Propyzamide

　　023950-58-5

　　C12 H 11 Cl2 NO

　　丙酮

　　28

　　磷胺 Ⅰ

　　Phosphamidon Ⅰ

　　013171-21-6

　　C10 H 19 ClNO5 P

　　丙酮

　　29

　　乙拌磷

　　Disulfoton

　　000298-04-4